細胞質染色是生物學實驗中用于觀察細胞質內結構、成分分布及代謝活動的重要技術。其核心在于通過特定染色劑與細胞質中的目標物質結合，在顯微鏡下呈現清晰可見的圖像。以下是細胞質染色的標準流程及關鍵要點：

　　一、實驗準備

　　1. 材料選擇

　　- 細胞類型：根據實驗目的選擇合適細胞，如動植物細胞(如洋蔥表皮細胞、人口腔上皮細胞)、培養細胞或微生物(如酵母菌)。

　　- 染色目標：明確需觀察的細胞質成分(如線粒體、液泡、糖原顆粒等)，選擇對應的特異性染色劑。

　　2. 試劑與儀器

　　- 染色劑：

　　- 活體染色劑：如詹納斯綠B(線粒體專一性染色)、中性紅(液泡染色)。

　　- 固定染色劑：如蘇丹染料(脂質檢測)、碘液(淀粉檢測)。

　　- 輔助試劑：生理鹽水(維持細胞形態)、緩沖液(調節pH)、酒精(脫色或固定)。

　　- 工具：光學顯微鏡、載玻片、蓋玻片、鑷子、滴管、染色皿、吸水紙等。

　　二、樣本制備

　　1. 細胞分離與處理

　　- 動植物細胞：

　　- 動物細胞：取口腔上皮細胞時，需用牙簽輕刮頰內側，涂于載玻片生理鹽水中；若為血液細胞，需抗凝處理后離心分離。

　　- 植物細胞：撕取洋蔥內表皮或葉片下表皮，剪成小片置于載玻片上。

　　- 微生物：酵母菌懸液需稀釋至適宜濃度(如10%葡萄糖培養液中培養)。

　　2. 細胞活性維持

　　- 活體染色需保持細胞活性，操作需迅速，避免長時間暴露導致細胞死亡。

　　- 若需固定細胞(如死細胞染色)，用95%酒精或醋酸-酒精混合液(3:1)固定10-15分鐘，水洗后染色。

　　三、染色操作

　　1. 染色劑配制

　　- 詹納斯綠B染液：1%詹納斯綠B溶于生理鹽水，現用現配(易沉淀)；

　　- 中性紅染液：0.1%中性紅水溶液，用于液泡活體染色；

　　- 蘇丹染液：蘇丹III或IV溶于酒精，用于脂滴檢測(需切片脫色)。

　　2. 染色步驟

　　- 活體染色(以線粒體為例)：

　　1. 載玻片中央滴加1-2滴詹納斯綠B染液；

　　2. 放置細胞樣本，覆蓋蓋玻片，避免氣泡；

　　3. 室溫染色10-15分鐘，顯微鏡下觀察線粒體藍綠色顆粒。

　　- 固定染色(以脂滴為例)：

　　1. 細胞樣本經酒精固定后，水洗去除殘留酒精；

　　2. 蘇丹染液染色15分鐘，酒精分色(洗去多余染料)；

　　3. 水洗后甘油封片，鏡下觀察橘紅色脂滴。

　　3. 染色條件控制

　　- 時間：活體染色時間過長會導致細胞死亡，染色劑滲漏；固定染色需充分反應。

　　- 濃度：染色劑濃度過高易導致背景過深，需按標準稀釋(如0.5%-1%溶液)。

　　- 溫度：常溫操作，高溫可能破壞細胞結構或加速染料揮發。

　　四、封片與觀察

　　1. 封片處理

　　- 活體染色樣本直接蓋蓋玻片，吸去多余染液；

　　- 固定染色樣本需梯度脫水(酒精系列)后，用中性樹脂或甘油封片。

　　2. 顯微鏡觀察

　　- 低倍鏡定位：快速找到染色區域，調整光強(活體染色需弱光避免漂白)。

　　- 高倍鏡細節：切換高倍物鏡，調節細準焦螺旋，觀察細胞器形態、分布及顏色。

　　- 對照設置：設置未染色對照組，排除非特異性著色干擾。

　　五、結果分析與記錄

　　1. 圖像特征

　　- 線粒體：詹納斯綠B染色后呈藍綠色棒狀或顆粒狀；

　　- 液泡：中性紅染色后呈紅色，占據細胞大部分體積；

　　- 脂滴：蘇丹染色后呈橘紅色圓形顆粒。

　　2. 數據記錄

　　- 繪圖標注細胞器位置、大小及數量；

　　- 記錄染色條件(時間、濃度)、細胞活性狀態及異?，F象(如質膜破裂導致染料外滲)。

　　六、注意事項

　　1. 安全操作：染色劑多為有毒化學品(如苯胺類)，避免皮膚接觸，實驗后洗手。

　　2. 污染控制：染色廢液需分類回收，避免交叉污染其他樣本。

　　3. 誤差排查：

　　- 背景過深：縮短染色時間或降低染液濃度；

　　- 細胞重疊：重新制片，確保單層分布。